14:46 / 12.07.2006
1. DNA Isolierung mit Proteinase K Verdau:
- Ausgangsprodukt: Zellen aus peripherem Blut einer gesunden Person
- 1 x 105 bis 5 x 107 Zellen mit NaCl (physiologische Kochsalzlösung) – damit das Medium in dem sich die Zellen befinden nicht mit der DNA interferiert
- Überstand abheben
- RSB-Puffer (400ml) und RNAse A (1ml) zum Pellet dazugeben à mischen (ohne Vortexer)
- 1 h bei 37 °C inkubieren (damit das Enzym wirkt)
- 400ml TENS-Puffer und 2ml Proteinase K hinzufügen
- auf 37 °C erhitzen – Inkubationszeit mind. 3 h (besser über nacht
- Lösung abkühlen lassen
- Aufreinigen mit 220ml 5M NaCl à gut mischen
- 10 min zetnrifugieren (13 000 U) à Proteinpellet bildet sich
- Überstand mit 2 mal so viel 100% EtOH fällen
- Tubes zentrifugieren (10 min, 13 000 U)
- DNA mit 70 % EtOH waschen, trocknen, lösen
- DNA in H2O geben (Resuspension)
- DNA – Messung der Konzentration im Photometer:
à einfüllen der DNA in eine Quarzbox
à Messung der DNA mit Licht bei einer Wellenlänge von 260nm und 280nm
Benjamin Katja
Ergebnis bei 260nm 0,07 0,48
Ergebnis bei 280nm 0,04 0,27
K= (OD(260) x 50 x Verdünnungsfaktor(20))/1000 70 ng/ml 48ng/ml
Qualität (Optimum = 1,7 – 2) OD (260)/ OD (280) 1,75 1,77
2. PCR
- Agarosegel (Pulver abwiegen – 1%ig), mit Puffer TAEIX mischen und kochen, abkühlen lassen und in einen Trax gießen
- Anfertigen des Lower Mix und des Upper Mix (es werden 2 Tubes gemacht + eine Negativkontrolle/ohne DNA)
- Lower Mix: Wasser mit Puffer, MgCl2, Dntp’s und den 2 Primern mischen
- Wachskügelchen in die Tubes füllen (trennen Lower Mix von Upper Mix)
- erwärmen auf °C
- einfüllen des Upper Mix (H2O, Puffer und Taq – im Falle von HOX11 +
5ml DMSO)
- Inkubieren
- Aufbrechen der Wachsschicht
- Gelkammer mit Puffer auffüllen
- Mix mit Orange G mischen und in die Wells einfüllen
- DNA-ladder-mix in ein Well einfüllen um später die Größe der DNA-Sequenzen messen zu können
- Stromquelle einschalten (man erkennt den Stromfluss anhand von kleinen Luftbläschen) – 30 Zyklen
4’ 94 °C
30’’ 94 °C
30’’ 50 °C
30’’ 72 °C
7’ 72 °C
Hold 4 °C
- Ausrechnen der Größe der DNA-Sequenz (HOX11, LMO2)
- Anschaun des PCR-Produktes unter UV-Licht
- Anhand der Ladder wird die Größe der DNA-Sequenz überprüft
3. GFX Aufreinigung
- Jeweils eine GFX-Säule in 4 Tubes hineingeben
- + 500ml capture buffer (nicht zu dicht an den Filter damit dieser nicht beschädigt wird)
- das PCR-Produkt in die GFX-Säule pipetieren
- Mischen
- Auf 14 000 U, 30s zentrifugieren
- Die Flüssigkeit die sich im Auffangröhrchen befindet weg schütten
- mit 500ml Waschpuffer aufreinigen
- Wieder 14 000 U, 30s zentrifugieren
- Das Auffangröhrchen wegschmeißen
- Die GFX-Säulen in ein 1,5 ml Microzentrifugetube einsetzen
- 50ml Elutionpuffer (H2O) hinzufügen
- Eine Minute lang bei Raumtemperatur inkubieren
- Eine Minute bei 14 000 U zentrifugieren
4. Purifikation der DNA von Gelbanden
- DNA-Bande aus dem Agarosegel mittels eines Skalpels ausschneiden
- Das Gewicht des ausgeschnittenen Teilchens herausfinden
- 10 mal so viel capture buffer hinzufügen wie das Gewicht des Gels
- Vortexen und auf 60 °C inkubieren bis das Gel aufgelöst ist (5-15 min.,
zwischendurch vortexen)
- Inhalt in eine GFX-Säule leeren und kurz zentrifugieren
- Eine Minute lang bei Raumtemperatur inkubieren
- Wieder 14 000 U, 30s zentrifugieren
- Die Flüssigkeit im Auffangtube wegschmeißen
- mit 500ml Waschpuffer aufreinigen
- Wieder 14 000 U, 30s zentrifugieren
- Das Auffangtube wegschmeißen
- Die GFX-Säulen in ein 1,5 ml Microzentrifugetube einsetzen
- 50ml Elutionpuffer (H2O) hinzufügen
- Eine Minute lang bei Raumtemperatur inkubieren
- um die purifizierte DNA zu bekommen zentrifugiert man und frau die
- Lösung 1 Minute lang bei 14 000 U
5. Ligation
- Ligation der PCR Produkte in den Vektor (Plasmid, in unserem Fall E.coli)
- Vector DNA (1ml), insert (7ml), Ligasepuffer (1ml), T4 DNA Ligase (1ml)
- auf 4 °C über Nacht inkubieren
6. Transformation
- Zellen auf Eis auftauen (kommen vom -80er) und immer auf Eis lassen
- 50ml von kompetenten Zellen (E.coli) dazu pepitieren
- Leicht flicken und 20’ auf Eis inkubieren
- Heatschock bei 42 °C exakt 2 min.
- 2 min. auf Eis stellen
- 500ml SOC dazu pipetieren (neben dem Feuer arbeiten da SOC ein Medium ohne Antibiotika ist)
- 1 Stunde auf den Schüttel-Inkubator stellen (37 °C)
- 5’ bei 5 000 U zentirfugieren, 300ml wegschmeißen
- Zellen auf Agarplatten übertragen
- auf 37 °C inkubieren (eine Nacht lang)
1 Dient dazu die Zellwände aufzubrechen
2 dient dazu die Proteine von der DNA zu trennen und aufzuspalten
3 (flüssige) Substanz >Trennen von einzelnen Elementen >Niederschlag in fester Form
4 kompetent = DNA aufnahmefähig
14:40 / 12.07.2006
Man extrahiert DNA aus Zellen um mit der reinen Form der DNA arbeiten zu können.
Die wichtigsten Punkte sind:
Ausgangsprodukt – Zellen
· Die Zellen mit PBS (phosphate buffered saline) oder NaCl (physiologische Kochsalzlösung) waschen damit das Medium in welchem die Zellen sind nicht mit der Arbeit mit der DNA interferiert.
· RSB puffer und RNAse dazu geben (dient dazu sie Zellwände auf zu brechen).
· Nach dem Inkubieren, TENS und Proteinase K hinzufügen damit die Proteine aufgespalten werden und wieder inkubieren.
· Abkühlen lassen, wieder NaCl (Aufreinigen) dazu mischen.
· Mit 100% EtOH ausfällen (DNA wird fest)
· Die DNA mit EtOH (70%) waschen und trockenen lassen.
· DNA in Wasser oder Puffer geben (Resuspension).
· DNA – Messung (in welcher Konzentration die DNA vorhanden ist).
Endprodukt – reine DNA
14:39 / 12.07.2006
PCR wird gemacht um DNA zu amplifizieren, zu klonen und um nachzusehen, wo sich ein bestimmtes Gen/DNA Sequenz befindet. Zuerst muss man die DNA extrahieren, und einen gewünschten Abschnitt mit Enzymen herausschneiden. Die DNA muss gefärbt werden damit man sie sehen kann und damit sie absinkt. und die Größe verschiedener Abschnitte anhand einenes ``ladders´´ zu messen. Danach muss man die DNA in ``wells`` in Agarosegel hinein pipetieren und eine Stromquelle anschließen. Die DNA wandert jetzt zur Anode.
Unter UV-Licht wird die ``ladder`` und die DNA sichtbar.